非洲猪瘟高通量测序与分子流行病学监测技术。高通量测序(NGS)成为病毒溯源、变异监测、传播链分析的技术,推动防控从被动应对向主动预警转变。通过对阳性样品全基因组测序,可精细解析毒株基因型、变异位点、重组类型,区分野毒株与疫苗株。2026年国内建立非洲猪瘟病毒基因组数据库,收录全球超3000株序列,实现毒株来源快速比对。分子流行病学监测实现三大突破:一是溯源化,通过基因序列同源性分析,确定病毒跨区域传播路径与污染来源;二是变异实时化,动态监测毒株变异趋势,预警高致病性、高传播力新毒株;三是防控靶向化,针对不同变异株制定差异化检测与防控策略,如对重组毒株采用特异性三重PCR检测。该技术已应用于口岸检疫、疫病暴发溯源、净化场评估等场景,为防控提供分子依据。非洲猪瘟病毒的基因分型基于 B646L 基因(编码 p72 蛋白)的部分序列。乌克兰中小型养殖场非洲猪瘟防控策略

非洲猪瘟病毒是一种大型、线性、双链DNA病毒,是非洲猪瘟病毒科(Asfarviridae)的成员,属名为非洲猪瘟病毒属(Asfivirus)(Alonsoetal.2018)。脊椎动物宿主是猪科(Suidae)成员。外形和栖息地利用与猪相似的西猯科(Tayassuidae)动物不易感(AHDardiri,Yedloutschnig,andTaylor1969;Friedrichs,Deutschmann,etal.2025)。病毒粒子整体直径为175-215nm(图24.1),结构非常复杂,二十面体衣壳和可缺失的脂质包膜组成Alonsoetal.2018;SalasandAndres2012)。对非洲猪瘟病毒粒子三维结构的单颗粒冷冻电镜分析显示,核仁实际上被两个不同的二十面体蛋白质衣壳和两个脂蛋白膜包围。其中一个膜遵循围绕内衣壳的二十面体对称性,而另一个是起源于出芽过程的外膜(Andresetal.2020)。养猪场非洲猪瘟诊断试剂非洲猪瘟病毒间接接触传播是由携带病毒的泔水工具设备物资饲料环境等传播,或由软蜱、蚊、蝇等叮咬传播。

生物安全与早期预警仍是出路当免疫学屏障短期内无法建立时,物理屏障就成了生死的底线。既然我们无法在猪的体内构筑阻挡病毒的城墙,就必须在猪场外部环境和内部环境中建立的生物安全体系。从被动的“等猪发病查死猪”,升级为主动的“查大群、查环境、查水源”。只有利用高灵敏度的诊断技术,在病毒侵入的极早期截获微弱信号,才能真正掌握保卫猪场健康的主动权。
自非洲猪瘟(ASFV)爆发以来,寻找一款既安全又高效的疫苗一直是全球兽医科学家和养猪人共同的期盼。目前,部分国家批准了基因缺失弱毒活疫苗(MLV),但基层猪场在使用中始终存在担忧,比如病毒排毒、潜在的毒力返强风险,以及无法区分自然发病和疫苗免疫(DIVA)等痛点。
2025 年非洲猪瘟整体呈现散发可控、毒株复杂、毒力趋弱的流行态势,已从早期强毒暴发转为中等毒力、弱毒株为主,虽整体损失有限,但风险持续存在。当前流行毒株涵盖 GII 型、GII 单缺 / 双缺株、GI 型及 GI/GII 重组毒株,其中 GII 双缺株占比比较高,达 3.41%,成为主流流行株。2025 年 1—8 月累计检测样本 110300 份,阳性 7714 份,总阳性率 6.99%,月度阳性呈波动上升,3—4 月、7—8 月为两个小高峰,提示季节交替、生猪调运活跃期防控压力有所增大。PCR 为病毒检测方法,ELISA 用于抗体筛查,是诊断主要技术。

内生物安全以网格化封闭管理为重点,有效遏制场内疫病的扩散。按猪舍、楼栋、生产单元划分网格,实现人员、工具、饲料、粪便专线,严禁跨区流动、交叉接触。异常猪只立即移入隔离舍,专人饲喂、单独工具,死猪密闭转运、规范无害化处理,严防人为扩散。定期开展生物安全再审计,重点排查消毒流程、操作规范、隔离措施等漏洞,同步开展非典型症状识别、采样检测、应急处置专项培训,提升一线人员早发现、早报告、早处置能力,形成全员防控格局。非洲猪瘟病毒在唾液、粪便、尿液、生殖器分泌物等的排出量通常较低且呈间歇性,除非出现出血症状。马来西亚种公猪非洲猪瘟疫苗
除已知的生物媒介(即钝缘蜱属的软蜱)外,其他吸血节肢动物或昆虫(吸血蝇类)被认为可能是机械传播媒介。乌克兰中小型养殖场非洲猪瘟防控策略
非洲猪瘟毒株进化呈现清晰阶段性特征:2018—2019 年为强毒 GII 型主导,毒力极强、传播力弱,猪场生物安全处于粗放阶段;2020 年起基因缺失株出现,毒力中等、传播力增强,生物安全体系初步建立;2021 年自然弱毒与缺失弱毒共存,规模场生物安全基本成型;2022—2023 年缺失弱毒、GI 型与各类毒株均衡流行,双缺株占比偏高,多为无症状发病;2024—2025 年 GI/GII 重组毒株增多,传播力进一步增强,潜伏期更长,可实现远距离空气传播,防控难度持续升级。乌克兰中小型养殖场非洲猪瘟防控策略
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