山东蛋白分离离心管选择

离心管就是一个简单的可以承受高转速压力的管子，比如离一些样品，分离出上清沉淀。 蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管，目前较常用的就是Millipore的。目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。可重复使用，使用一次就扔掉太浪费。以下是个人总结的使用方法和注意事项。离心超滤管会有一个类似于内管和外管的两个部分，内管中是带有一定分子量的膜，当高速离心时，分子量比它小的就漏到下面的管子(即外管)中了，分子量比它大的就截留在上面(即内管中)，就是超滤的原理。超滤离心管的选择主要看你要截留那部分物质，就选择比较小分子量小的，如果你要截留26KD的，你要的超滤管就要比26小。但两者也要有一定的差距，比如，选择20-25KD之间的就不合适，因为26的也可能会出去(这是由制造工艺决定的)。所以选择20KD以下的超滤管比较合适。超滤离心管适用于从细胞培养基、血浆、尿液等样品中提取蛋白质、核酸、多糖等大分子化合物。山东蛋白分离离心管选择

多肽超滤离心管，垂直设计和有效的膜表面积提供了快速的样品处理，较高的样品回收率(> 90% 的样品回收率)，以及 80~100 倍浓缩的能力。浓缩物使用吸液器从过滤装置中收集，而超滤液则在提供的离心管中收集。超滤离心管是一种可以为蛋白质样本的浓缩和缓冲交换提供可靠准确结果的一次性超滤离心式过滤装置，与层析、透析等方法相比，超滤对被处理的分子更加温和，不需要有机萃取，不会导致蛋白变性，且简单高效。规格超滤浓缩器可处理体积4mL 以内的样本，离心管内包含一个内置竖直的聚醚砜（PES）膜过滤装置，聚醚砜膜具备低蛋白附着、高通量的特点，可应用在3KD、5KD、10KD、30KD、50KD、100KD 六种不同的截留分子量中。截留分子量标识和体积刻度蚀刻在浓缩器的侧面便于识别。山东蛋白分离离心管选择超滤离心管还可用于检测空气样本中的微粒子、有机化合物等污染物，并进行空气质量监测和控制。

超滤离心管使用注意事项：当浓缩到剩下1ml时，取50ul缓冲溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mgml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的缓冲溶液，直到蛋白不发生沉淀为止。

根据其大小，又分为1.5ml、2ml、5ml、10ml、15ml、50ml等，国产的离心管一般就是这几个规格，用的较多的也就是10ml和50ml的。如果您的离心机是配30ml或者其他规格的离心管时，就要考虑进口的了。另外，离心管还有圆底和尖底，以及螺旋盖和插盖之分。螺旋盖的离心管带有较精细的刻度，插盖的只有一个总体的容量标示。实验室常用的离心管有塑料的和玻璃的，一般塑料的用的较多，因为玻璃的离心管不能用在高速或者超速离心机上。塑料的离心管又有PP（聚丙烯）、PC(聚碳酸酯)，PE(聚乙烯)等材质。PP的管子性能相对来说比较好。塑料的离心管透明或者半透明，可以直观的看到样品离心情况，但是比较容易变形，抗有机溶剂的腐蚀性较差，所以使用寿命较短。因此，实验室一般会经常购买离心管。下面就对各种材质分别介绍一下。根据其材质的不同总体可以分为塑料和玻璃的，塑料的离心管用的较多，又可以分为PP、PC、PS等，根据不同需要，生产厂家会选择不同的塑料材料来进行制作。超滤离心管通常有不同孔径大小的超滤膜供选择，以便过滤出不同大小范围内的目标分子。

质量和重心都应该平衡。注意速度和加速度不要太快，否则会直接损坏超滤膜。开始离心超滤（离心预冷至4度〉。膜和旋转轴的方向根据说明进行调整（对于角向离心机，膜垂直于轴〉。在实际应用中，一般的速度开度比手动低，可以延长离心管的使用寿命。4。当浓缩到剩余的1毫升时，取中国产的504.1l布拉德福德溶液，加104 l流过，看是否变蓝，以判断ur管是否漏蛋白。如果管道泄漏，重新倒入上层，然后流过新管道开始超滤。为了准确确定管道是否泄漏，用5 mg/ml BSA离心10分钟，然后将其穿过，大致运行胶水或Bradf ord，继续添加剩余的蛋白质溶液以浓缩（在冰上操作以防止蛋白质加热〉，直到所有浓缩物都添加完毕。离心过程中应注意是否有蛋白质沉淀，导致堵塞。如果发生沉淀，有必要确定沉淀的具体原因是蛋白质浓度过高还是缓冲液不当。超滤离心管还可用于制备高纯度的酶、蛋白质等生物制品，以应用于不同领域的实验室操作。广州3K超滤离心管价位

超滤离心管也可用于从血浆或尿液中提取蛋白质和核酸等大分子化合物。山东蛋白分离离心管选择

当浓缩到剩下1ml时，取50ul缓冲溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mgml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的缓冲溶液，直到蛋白不发生沉淀为止。山东蛋白分离离心管选择

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