免疫组化结果要如何分析？
（1）阳性着色细胞计数法。在40*光镜下，随机选择不重叠的10个视野，机器或人工计数阳性着色细胞，每组3~6张不同动物组织切片，然后进行组间比较即可。
（2）灰密度分析法。可以通过在不同组别和不同动物组织切片上选择相同区域、相同条件下用image j进行灰密度分析，然后进行统计分析即可。
（3）评分法。用光学显微镜下对组织切片分别按染色程度（0~3分为阴性着色、淡黄色、浅褐色、深褐色）、阳性范围进行评分（1~4分为0~25%、26~50%、51~75%、76~100%），**终可以分数相加，再进行比较。对于以上这几种方法，各有利弊，请细心选择。要想得到正确结果的前提是你要做出着色均匀、背景很浅的高质量切片。
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免疫组化实验所用的组织和细胞标本是什么样的？
实验所用主要为组织标本和细胞标本两大类，前者包括石蜡切片（病理大片和组织芯片）和冰冻切片，后者包括组织印片、细胞爬片和细胞涂片。其中石蜡切片是制作组织标本**常用、**基本的方法，对于组织形态保存好，且能作连续切片，有利于各种染色对照观察；还能长期存档，供回顾性研究；石蜡切片制作过程对组织内抗原暴露有一定的影响，但可进行抗原修复，是免疫组化中优先的组织标本制作方法。
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免疫组化的发展路程？在临床病理诊断中，免疫组织化学(IHC)是一种很重要的技术和手段，从20世纪70年代开始，免疫组化技术就应用于病理诊断，对于诊断cancer、cancer分类、判断预后产生了巨大的影响，同时也扩展了人们对于各种疾病及cancer形成过程的认识，提高了病理诊断与研究水平。但是，随着免疫组化的广泛应用，发现免疫组化技术存在一些局限性。深入研究免疫组化原理和技术，必须熟悉各种抗体真阳性反应部位，实现实验室间免疫组化标准化，使免疫组化在病理诊断中发挥比较大的辅助作用。如果您有免疫组化相关的实验，可以与我们英瀚斯生物进行联系。
免疫组化结果背景染色较深的原因有哪些？
（1）抗体浓度过高：一抗浓度过高是常见的原因之一。解决办法是，每次使用新抗体前应当对其工作浓度进行测试，使每一抗体个体化，找到适合自己实验室的理想工作浓度，既使是即用型的抗体也应如此，不能只简单的按说明书进行染色。
（2）抗体孵育时间过长或温度较高：解决办法是，严格执行操作规程，比较好随身佩带报时表或报时钟，及时提醒，避免因遗忘而造成时间延长。现在流行的二步法（Polymer）敏感性很高，要求一抗孵育的时间不是传统的1小时，而是30分钟，因此，要根据染色结果进行调整。
（3）DAB变质和显色时间太长：DAB比较好现用现配，如有沉渣应进行过滤后再用。配制好的DAB不应存放时间太长，因为在没有酶的情况下，过氧化氢也会游离出氧原子与DAB产生反应而降低DAB的效力，未用完的DAB存放在冰箱里几天后再用这种似乎节约的办法是不可取的。DAB的显色比较好在显微镜下监控，达到理想的染色程度时立即终止反应。但是当染**太多时或用染色机时，这样做似乎不现实，但至少应对一些新的或少用的抗体显色时进行监控，避免显色时间过长。
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免疫组化的优缺点
免疫组化的优点在于其高特异性和敏感性，能够在组织原位检测目标蛋白的表达和分布。此外，免疫组化可以与其他技术（如荧光显微镜、电子显微镜）结合，提供更丰富的信息。然而，免疫组化也存在一些缺点。首先，实验步骤复杂，需要优化多个参数（如一抗浓度、孵育时间）。其次，免疫组化的结果可能受到组织固定、抗原修复等因素的影响，导致假阳性或假阴性结果。此外，免疫组化的定量分析相对困难，通常只能进行半定量分析。 英瀚斯生物，组织包埋、切片、染色、免疫组化拍照、报告分析，一站式搞定！福建什么是免疫组化哪家好
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免疫组化的基本原理
免疫组化（Immunohistochemistry, IHC）是一种利用抗原-抗体特异性结合的原理，通过显色反应在组织切片上定位特定蛋白质的技术。该技术结合了免疫学和组织学的优点，能够在细胞或亚细胞水平上精确显示目标蛋白的分布和表达情况。免疫组化的基本原理是利用一抗与目标蛋白结合，再通过二抗与一抗结合，通过显色系统（如DAB）使目标蛋白可视化。这种方法不仅能够提供蛋白质的定位信息，还能通过半定量分析评估蛋白质的表达水平。 黑龙江做得好的免疫组化怎么样
