免疫组化结果要如何分析？
（1）阳性着色细胞计数法。在40*光镜下，随机选择不重叠的10个视野，机器或人工计数阳性着色细胞，每组3~6张不同动物组织切片，然后进行组间比较即可。
（2）灰密度分析法。可以通过在不同组别和不同动物组织切片上选择相同区域、相同条件下用image j进行灰密度分析，然后进行统计分析即可。
（3）评分法。用光学显微镜下对组织切片分别按染色程度（0~3分为阴性着色、淡黄色、浅褐色、深褐色）、阳性范围进行评分（1~4分为0~25%、26~50%、51~75%、76~100%），**终可以分数相加，再进行比较。对于以上这几种方法，各有利弊，请细心选择。要想得到正确结果的前提是你要做出着色均匀、背景很浅的高质量切片。
英瀚斯生物，专业病理染色团队，不止做检测，还有专业病理分析。 免疫组化流程是什么样的？云南大鼠免疫组化要多久
实验失败常见问题分析有哪些：
为什么在显微镜下观察发现所有的切片都成阴性？
答：这种现象主要是由操作不当导致，可能的原因有：1.染色操作不当，致使染色失败；2.漏加一种抗体或者制备出的抗体没有活性；3.缓冲液中有叠氮化钠，抑制了酶的活性；4.复染或脱水剂使用不当等。建议逐一排查，找到原因后重新进行实验。
在显微镜下观察发现所有的切片都成阳性，这是为什么？答：与上一个问题类似，出现的原因也是试验操作存在问题，可能的原因有：1.切片在染色过程中抗体过浓，或者干片了；使用的呈色底物溶液已变色或呈色反应时间过长；3.抗体温育的时间过长等。
在显微镜下观察发现切片的背景很深，这是为什么？答：以下几方面会导致切片的背景过深：1.蛋白质封闭不够或所用血清溶血，造成抗体的非特异性反应；2.内源性过氧化酶没有完全阻断，显色过程中过氧化酶与酶底物反应，造成背景；3.底物呈色反应时间过长或呈色反应后漂洗不彻底。 云南细胞免疫组化如何做好免疫组化实验？
免疫组化的局限性：在病理诊断中，随着各种抗体新的用途不断被发现及越来越多的新型抗体的出现，免疫组化在病理诊断和医疗中已有了很重要的位置，对于cancer诊断、鉴别诊断、分类及诸多方面产生了重大的影响。但是免疫组化技术还存在着缺陷和不足，作为病理医生和病理技术人员不仅要充分认识到缺陷和不足，而且要努力避免由于缺陷和不足给诊断带来的误区，这就要求病理医生和病理技术人员在工作中不断学习与研究，在实际操作中总结经验教训，分析失败原因，努力实现操作规范化、标准化，才能充分发挥免疫组化在病理诊断及鉴别诊断、临床医疗中的指导作用。
在临床应用中，免疫组化还可以进一步分类不同qi官与组织交界处cancer。由于重叠的特征，在一些组织qi官交界处的cancer，只凭组织学基础对cancer进行分类很困难。如胃肠道梭形细胞肉瘤是肌肉起源的平滑肌肉瘤，是间质起源的胃肠道间质瘤(GIST)，还是神经起源的神经鞘瘤;同样发生于组织交界处的cancer有睾丸胚胎cancer与精原细胞cancer，两者较难区别，且医疗与预后明显的不同，但用免疫组化检测角蛋白就较易于区别:角蛋白阴性则为精原细胞cancer，而角蛋白阳性则为胚胎cancer。免疫组化样本如何处理？
免疫组化实验所用的组织和细胞标本是什么样的？
实验所用主要为组织标本和细胞标本两大类，前者包括石蜡切片（病理大片和组织芯片）和冰冻切片，后者包括组织印片、细胞爬片和细胞涂片。其中石蜡切片是制作组织标本**常用、**基本的方法，对于组织形态保存好，且能作连续切片，有利于各种染色对照观察；还能长期存档，供回顾性研究；石蜡切片制作过程对组织内抗原暴露有一定的影响，但可进行抗原修复，是免疫组化中优先的组织标本制作方法。
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免疫组化分类中免疫酶标方法，英瀚斯生物为您介绍。免疫酶标方法是继免疫荧光后，于60年代发展起来的技术。基本原理是先以酶标记的抗体与组织或细胞作用，然后加入酶的底物，生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒，通过光镜或电镜，对细胞表面和细胞内的各种抗原成分进行定位研究。免疫酶标技术是目前定位准确、对比度好、染色标本可长期保存，适合于光、电镜研究等。免疫酶标方法的发展非常迅速，已经衍生出了多种标记方法，目前在病理诊断中广为使用的当属***法（过氧化物酶-抗过氧化物酶）、ABC法（卵白素-生物素-过氧化物酶复合物）、SP法（链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶）、即用型二步法（聚合物链接）等。云南大鼠免疫组化要多久
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