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动物实验外包模型介绍：阿尔茨海默病(AD)大鼠模型建模方法SD大鼠均采用1%戊巴比妥钠40μg/g腹腔内注射麻醉，麻醉后继而固定于脑立体定位仪上。按照大鼠脑立体定位图谱，以前囟为零起点，前囟后3.5mm处为穿刺点，中线右侧旁开2mm，而后牙科钻钻开颅骨，采用微量注射器自脑表面垂直进针3mm，即：(AP=-3.5mm,ML=2.0mm,DV=3.0mm)，双侧海马CA1区缓慢匀速注射Aβ1-40各10μg(1μL)，留针5min，退针后缝合伤口。造模后3d后，开始尾静脉注射，注射生理盐水，大鼠每只给药100μl/次/d，连续给药21d后，进行水迷宫行为学检测。海南值得信赖的动物实验外包南京动物实验外包公司，科研课题解决方案。

动物实验外包模型介绍：帕金森(PD)模型6-OHDA致大鼠PD模型的制作：(1)SD大鼠称重，按每笼5-6只饲养。在实验设计的时间点，将大鼠以1%戊巴比妥钠麻醉，待动物失去知觉即可开始操作。(2)大鼠用立体定位仪将双耳及门齿固定。自矢状缝皮肤划开，棉球止血，定位，钻孔，挑破脑膜（以黑质致密部单侧损毁为例，参照Paxinos图谱确定注射坐标，前颅后5.2mm,左侧或右侧旁开2.2mm,进针深7.8mm)。(3)微量注射器注射，以浓度2µg/µL，注射速度1µL/min注射，并留针10min,以1mm/min的速度退针。止血，缝合伤口。在实验动物苏醒的过程中，注意保温，观察各项生命体征。156第四章，神经系统疾病常用动物模型的制作在手术后的数周内，观察动物的进食、体重、行为学变化等情况。单侧损毁的方法，技术上比较成熟，操作较易、死亡率低，模型相对稳定，易区分双侧肢体运动细小异常，能对比患侧黑质的手术前后及与正常侧表现。双侧毁损是较大范围神经化学和行为学损伤，更似人类PD。

动物实验外包模型介绍心肌梗死(MI)小鼠模型建模方法1.3%戊巴比妥钠80mg/kg腹腔注射麻醉，用小鼠剃毛器剃除小鼠胸部及腋下毛发（充分暴露手术区），用碘酒和75％乙醇手术区消毒。2.气管插管：麻醉后，夹趾检测无反应即可进行MI手术。打开外置光源、显微镜开关，打开呼吸机，设置好各参数（呼吸频率110bpm），将气管插管沿声门插入气管，取下小鼠接上呼吸机，观察小鼠呼吸状况，胸廓起伏与呼吸机频率一致表示插管成功，即可进行MI手术。3.小鼠采用右侧卧位，用眼科剪在左前肢腋下，用显微剪于三、四肋间打开胸腔充分暴露心脏，显微直镊轻轻夹起少量心包并于左心耳下撕开少许心包，充分暴露左冠状动脉前降支（LAD）或所在区域。4.结扎冠状动脉5.关胸6.术后管理南京动物实验外包公司，完善靠谱的服务。

动物实验外包模型介绍：复合因素致萎缩性胃炎动物模型【造模方法】1.大鼠以20mmol/L去氧胆酸钠每日灌胃6ml/kg,连续27周;40%酒精每周二、五空腹灌胃6ml/kg,连续12周,之后改为60％酒精,再连续15周;0.1%氨水放在避光的饮水瓶中,自由饮用,每天调换,连续27周。2.大鼠用0.2%去氧胆酸钠作饲料,每天以55℃热开水2ml/只进行灌胃刺激,并在造模的第1周及第5周每只皮下注射佐剂抗原免疫1次。造模期间动物常规喂养,连续造模90天。本法也可将0.2%去氧胆酸钠换为猪胆汁,将胆汁与50℃热水1：1比例12.5ml/kg灌胃。3.大鼠以60%酒精,每周空腹灌胃2次,每次8ml/kg;20mmol/L去氧胆酸钠灌胃,每日1次,每日8ml/kg;0.05％~0.1%氨水作为大鼠日常饮用水自由饮用,并记录每日饮用量;5mg/ml吲哚美辛灌胃,每日1次,每次8ml/kg,共24周。观察指标为:病理组织学改变,胃黏膜屏障功能指标,胃分泌功能指标等。南京动物实验外包公司，中药灌胃实验。海南值得信赖的动物实验外包

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动物实验外包肝*模型介绍建立肝*动物模型的方法①用二乙基亚硝胺（DEN）诱发大鼠肝*。选用成年封闭群大鼠，雌雄不限，给予0.25％DEN水溶液0.25～1ml灌胃或稀释10倍，放在饮水瓶中自由饮水，剂量为每天2～10ml/kg，喂养半年左右。②用4-二甲基氨基偶氮苯（DBA）诱发大鼠肝*。选用成年大鼠，用含0.06％DBA饲料喂养，饲料中维生素B2不应超过1.5～2mg/kg，连续喂养4～6个月。③用2-乙酰氨基酸（2AAF）诱发大鼠肝*。给成年大鼠喂含0.03％2AAF的饲料，每日每只平均2～3mg，连续3～4个月。④用亚氨基偶氮甲苯（OAAT）诱发大鼠肝*。选用成年大鼠，用含1％OAAT苯溶液涂在大鼠的两胛间皮肤上，隔日1次，每次2～3滴，连续7～8周。⑤用黄曲霉素诱发大鼠肝*。饲料中含0.001～0.015mg/kg混入饲料中喂6个月河北靠谱的动物实验外包

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