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膜片钳电生理技术服务基本参数
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膜片钳实验中电极制备之分两次拉制,首先次拉长7~10mm,直径小于200μm,在此基础上进行第二次拉制,较终使尖锐端的直径为1~2μm,两步拉制的目的主要是使电极前端的锥度变大,狭窄部长度缩短,因此可降低电极的串联电阻,也可减少全细胞记录时的电极液透析时间。由于膜片微电极较忌沾染灰尘和脏物,更忌触碰尖锐端附近部位,所以一般要求在使用前制作。抛光:将电极固定于显微镜工作台上,在镜下将尖锐端靠近加热丝,当通电加热时,可见电极尖锐端微微回缩,此时电极变得光滑,且尖锐端的杂质烧去,得到较干净的表面。从而有利于和细胞膜紧密封接,并在封接后更易保持稳定。膜片钳使用操作注意:不得在本机电脑下载别的软件,拷数据时需用实验室配置的U盘。徐州神经生物学膜片钳服务

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膜片钳操作实验:膜片钳放大器是整个实验系统中的中心,它可用来作单通道或全细胞记录,其工作模式可以是电压钳,也可以是电流钳。从原理来说,膜片钳放大器的探头电路即I-V变换器有两种基本结构形式,即电阻反馈式和电容反馈式,前者是一种典型的结构,后者因用反馈电容取代了反馈电阻,降低了噪声,所以特别适合很低噪声的单通道记录。由于供膜片钳实验的专门计算机硬件及相应的软件程序的相继出现,使得膜片钳实验操作简便、效率提高。如与EPC-9型膜片钳放大器(内含ITC-16数据采集/接口卡)配套使用的软件PULSE/PULSEFIT,它既可产生刺激波形,控制数据采集,又可分析数据,同时具有用于膜电容监测的锁相放大器,多种软件功能集成于一体。黄山药理学实用膜片钳设计公司膜片钳技术的应用范围:对离子通道生理与病理作用机制的研究。

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膜片钳技术—打开细胞电生理研究之门:膜片钳技术(patchclamptechniques)是采用钳制电压或电流的方法对生物膜上离子通道的电活动进行记录的微电极技术。膜片钳技术的原理:用一个尖锐端直径在1.5-3.0um的玻璃微电极接触细胞膜表面,通过负压吸引使电极尖锐端与细胞膜之间形成千兆欧姆以上的阻抗封接,此时电极尖锐端下的细胞膜小区域(膜片,patch)与其周围在电学上分隔,在此基础上固定(钳制,Clamp)电位,对此膜片上的离子通道的离子电流进行监测及记录。

膜片钳使用的注意事项:工作原理膜片钳是一种能够直接观察单一的离子通道蛋白质分子对相应离子通透难易程度等特性的一种实验技术。它的基本原理是以一个光洁,直径约为0.5~3um的玻璃微电极同神经或肌细胞的膜接触,之后对微电极另一端开口处施加适当的负压用电极的纤细开口将与电极接触的那一小片膜轻度吸入,如此在微电极开口处的玻璃边沿以及这一小片膜周边会形成紧密的封接,它的电阻能够达到数个或数十个千兆欧,这世界上就是在化学上完全隔离了吸附在微电极开口处的那一片膜同膜的其余部分,通过微电极记录到的电流变化光光和该膜片中通道分子的功能状态相关联。内面向外式膜片细胞内外和电极内的溶液均可调控。膜片钳和电压钳的区别:电位固定的细胞膜面积不同,进而所研究的离子通道数目不同。

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膜片钳电生理技术服务实验流程之电机制备和实验的记录和分析数据:电极制备:膜片微电极是将玻璃毛细管用电极拉制仪拉制而成的,主要分为以下步骤:拉制:膜片微电极是将玻璃毛细管用拉管仪拉制而成。涂硅酮树酯:将硅酮树酯涂于微电极的较尖锐端以外的部分,然后将其通过加热镍铬电阻线圈而烘干变固。热刨光:在显微镜下,将微电极尖锐端接近热源进行热刨光处理可提高巨阻抗封接的成功率。充灌微电极液:用于灌充微电极的液体需经为空滤膜过滤,除去妨碍巨阻抗封接形成的灰尘。进行实验,记录和分析数据:准备工作就绪后即可进行实验操作,数据记录和分析。用膜片钳技术可以直接观察和分辨单离子通道电流及其开闭时程。徐州神经生物学膜片钳服务

全自动膜片钳系统技术指标:药液交换迅速。细胞内、外液的交换是在平面芯片上进行。徐州神经生物学膜片钳服务

膜片钳在通道研究中的重要作用:用膜片钳技术可以直接观察和分辨单离子通道电流及其开闭时程、区分离子通道的离子选择性、同时可发现新的离子通道及亚型,并能在记录单细胞电流和全细胞电流的基础上进一步计算出细胞膜上的通道数和开放概率,还可以用以研究某些胞内或胞外物质对离子通道开闭及通道电流的影响等。同时用于研究细胞信号的跨膜转导和细胞分泌机制。结合分子克隆和定点突变技术,膜片钳技术可用于离子通道分子结构与生物学功能关系的研究。徐州神经生物学膜片钳服务

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膜片钳的数据如何处理:穿孔膜片(perforated patch)是为克服常规全细胞模式的胞质渗漏问题,有学者将与离子亲和的制霉菌素或二性霉素b经微电极灌流到含有类甾醇的细胞膜上,形成只允许一价离子通过的孔,用此法在膜片上做很多导电性孔道,借此对全细胞膜电流进行记录。由于此模式的胞质渗漏极为缓慢,局部串联阻抗较常规全细胞模式高,所以钳制速度很慢,也称为缓慢全细胞模式。它适合于小细胞的电压钳位,对于直径大于30μm的细胞很难实现钳位。不足之处是由于电极与细胞间交换快,细胞内环境很容易破坏,因此记录所用的电极液应与胞浆主要成分相同,如高k+,低na+和ca2+及一定的缓冲成分和能量代谢所需的物质。...

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