细胞转染之PEI转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以1×105至4×105细胞/cm2的密度平铺细胞于35mm培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的70-90%)。将细胞置于含5%CO2的37℃温箱中孵育8-24h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前2h换液(用1.5ml无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA混合物以35mm组织培养皿用240μl反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120μl1×HBS,再加入质粒DNA(总量1-3μg为佳),混匀后加入等体积PEI工作液,充分混匀后室温静置20-30min,较后将这240μl的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含5%CO2的37℃温箱孵育。操作简便,对细胞毒性小,转染效率高受到研究者们的青睐。广州正规细胞高效转染试剂单价

细胞转染,你至少要掌握以下几点:主要有下面几种方法::化学法:磷酸钙法、DEAE-右旋糖苷法、阳离子脂质体法;物理法:电穿孔法、显微注射法、颗粒传递法;细菌介导法:逆转录细菌、腺细菌A.阳离子脂质体法:带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。特点:简单通用,适用性广,转染效率高,重复性好,但转染时需除血清,转染效率随细胞类型变化大。由于脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会远大于悬浮细胞,所以贴壁比悬浮转染效率要高。悬浮细胞建议使用电穿孔法。B.电穿孔法:利用高压电脉冲对细胞膜的干扰,使其形成利于核酸进入的微孔广州正规细胞高效转染试剂单价蛋白表达和培养基的选择哺乳动物细胞系合成可溶的。

细胞转染操作方法:转染,是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入,转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例;化学介导方法很多,如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术;生物介导方法,有较为原始的原生质体转染,和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法,应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术,是目前转染效率较高的方法,同时具有细胞毒性很低的优势。但是,细菌转染方法的准备程序复杂,常常对细胞类型有很强的选择性,在一般实验室中很难普及。
细胞转染的常用方法:人工脂质体法原理:带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物,进而可被细胞内吞稳定转染/瞬时性转染。这种方法几乎适用于所有细胞,转染效率高、重复型好,但转染时需要去除血清,转染效果随细胞类型变化大。实验步骤:在单独试管中分别稀释核酸及转染试剂→脂质体与核酸的磷酸骨架结合,形成复合物→脂质体上的正电荷有助于复合物与细胞膜结合→复合物通过内吞作用进入胞浆→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。到时后,根据细胞种类决定是否移除混合液。

细胞转染的注意事项:物品(PS)物品,比如青霉素和链霉素,是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒,但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性,使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性,导致转染效率低。所以,在转染培养基中不能使用物品,甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样,在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染,不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素,ICIN选择性物品的竞争性克制剂。另外,为了保证无血清培养基中细胞的健康生长,使用比含血清培养基更少的物品量。有血清时的转染 血清一度曾被认为会降低转染效率。金华正规细胞高效转染试剂供应商
转化、转染、转导几个名词是从事生命科学研究的初学者经常碰到的。广州正规细胞高效转染试剂单价
如何有效提高细胞转染实验效率:1.选择合适的转染试剂不同细胞系转染效率通常不同,但细胞系的选择通常是根据实验的需要,因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献,通过这些资料可选择较适合实验设计的转染试剂。当然,较适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。2.保持较佳的细胞状态一般低的细胞代数(<50)能确保基因型不变。较适合转染的细胞是经过几次传代后达到指数生长期的细胞,细胞生长旺盛,较容易转染。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。也就是说同一种系的细胞株,在各实验室不同培养条件下,其生物学性状发生不同程度的改变,导致其转染特性也发生变化。因此,如果发现转染效率降低,可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。广州正规细胞高效转染试剂单价
细胞转染那些事儿:1.设置阴性和阳性对照:一般在转染后24-48h,靶基因即在细胞内表达。可依据不同的实验目的,24-48h后即可进行靶基因表达的检测等实验。2.转染后效率的检测方法:观察转染后细胞荧光情况;qPCR验证;WB检测敲减或过表达蛋白。3.转染效率低,可采取以下两种方法:1)复转染,即转染后12-24h再进行转染,前提是该细胞对脂质体的耐受性较好,转染后细胞死亡数较少。2)通过药筛来杀死未转入成功的细胞,前提是该质粒带有物品抗性的基因。4.电转时,不同的细胞需要的电压是不一样的,需要做预实验,摸索较佳条件。对于大多数细胞而言,较佳电压位于250-1250v/cm。电击后,应该将DN...