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原代细胞培养之取材：取材作为原代细胞培养过程中的靠前部至关重要，以下几种取材技术，你都用过哪些方法呢？各类组织取材，操作及注意事项：1.皮肤和粘膜主要取皮片，面积一般2~4平方厘米。2.内脏和实体瘤：1）无菌环境；2）熟悉所需组织的类型和部位；3）要避开破溃、坏死液化部分，以防污染，尽量去除混杂的结缔组织。3.血液细胞一般多抽取静脉外周血，或从淋巴组织中(如脾、扁桃体、胸腺、淋巴结等)分离细胞，取材时应注意抗凝。4.骨髓、羊水、胸/腹水细胞严格无菌，注意抗凝，还要尽快分离培养，离心后，用无钙、镁PBS洗两次，再用培养液洗一次后即可培养，不宜低温存放。用70％的酒精冲洗冻存管，然后擦去多余酒精。温州正规原代细胞分离试剂盒单价

取材的基本要求和注意事项叙述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鲜和保鲜新鲜组织易于培养成功，取材时应尽量在4~6h内能制作成细胞，尽快入箱培养，若不能即时培养，应将组织浸泡于培养液内，于4℃存放。若组织块较大，应在除去表面血块、坏死组织、脂肪和结缔组织后，切碎于培养液内4℃存放，但时间不能超过24h。对于已切碎的组织或血液、淋巴组织应加入含10%二甲基亚砜的培养基，按细胞冻存方式于液氮中冷冻保存。（2）取材应严格无菌所取标本材料应在无菌条件下进行，为了确保无菌，对所取材料若疑有污染的可能，应将所取组织在含高浓。温州正规原代细胞分离试剂盒单价取样后培养时间较少需要一周以上的时间，期间可换液或者传代。

分散细胞培养大致步骤为：将动物组织从机体中取出离散成单个细胞(常用胰蛋白酶)，置合适的培养基中培养，使细胞得以生存、生长和繁殖(注意整个过程无菌)。原代培养：当采用外科操作的方法将细胞从有机体中分离下来，然后置于合适的培养环境中，它们会附着、分裂和生长。这称为原代培养。原代培养有两种基本的方法。靠前种，使用外植块，将小片的组织粘附到玻璃或经处理的塑料培养瓶中，并浸于培养液中。几天之后，单个细胞将从组织外植块中移动到培养瓶的表面或基质中开始分裂生长。第二种方法，也是使用更普遍的方法，通过在组织碎片中加入消化（蛋白水解）酶，如胰酶或胶原酶，消化成团聚集的细胞从而加快这一步骤。得到单细胞的悬液，然后将其置于含有培养液的细胞培养瓶内，让其继续生长分裂。这种方法成为酶解。

原代细胞转染实验要点：转染过程不可添加物品，否则会导致细胞死亡；开始实验siRNA的用量设置在终浓度10nM、30nM、50nM、100nM进行摸索，后续实验根据实验结果修改。RFectPM可用来转染siRNA、antisenseRNA、microRNA等200bp以内的小分子RNA和DNA，可转染绝大多数原代细胞。对于大多数原代细胞，RFectPM的细胞转染阳性率都在80%以上，而转染细胞死亡率不到10%。RFectPM的使用也极其简便，先将sRNA与RFectPM室温混合，再将siRNA-RFectPM混合物直接加入含培养基的细胞，血清对转染效果没有影响，不必刻意添加或更换培养液。用专门的原代细胞培养基进行培养，较大限度提高原代细胞的生长。

细胞培养注意事项及常见问题解答：传代1、贴壁细胞传代时，先用消化液润洗一遍；弃掉后，再加入适量消化液置于孵箱或镜下观察消化；当细胞变圆，彼此之间产生空隙，加入等量或大量的培养基终止消化，培养基中的血清可以克制胰蛋白酶的活性。2、这里我没有明确提到胰蛋白酶的浓度，并不是说浓度越高越好。胰蛋白酶底物的特异性差，会破坏细胞膜成分。PH8.0，37度环境下，消化液的消化能力是较强的。培养基中的血清会降低胰酶的消化能力，所以每次消化前，也要用PBS反复冲洗干净培养皿。日常用的比较多的消化液浓度：a)0.25%胰蛋白+0.02%EDTA。用多聚赖氨酸（或参照说明书）包被培养瓶。贵阳正规原代细胞分离试剂盒直销价

使用这种方式需注意勿使搅拌速度过快，否则即可使培养液溢出又容易造成污染。温州正规原代细胞分离试剂盒单价

传代接种：当原代培养瓶中的细胞已经生长且布满了所有可用的培养基质后，它们必须进行传代以便为继续生长提供空间。这通常需要将细胞尽可能轻柔地从基质上用胰酶消化下来。这些酶类似于原代培养中使用的酶，它能够打断使细胞粘附到基质上的蛋白键。有些细胞株可以通过轻轻刮除培养瓶底部的细胞加以收集。收集之后，将细胞悬液进行进一步的分散并置于新的培养瓶中。当细胞过多时，则可以用合适的低温保护的试剂，如二甲基亚砜或甘油进行小心冰冻，然后置于低温环境（－130℃以下）中，直到需要再次使用。温州正规原代细胞分离试剂盒单价