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糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：Schiff氏染液的配制是关键，尤其是偏重亚硫酸钠的质量，打开应是粉剂，且带有硫的气味，若成团或没有气味，则不能用，配制时使用的容器、药勺、称药天平与称药纸等必须洁净、无污染。新配制好的Schiff剂为无色透明液体[1]，配好后可分成小份置于-20℃保存，用时取一份恢复到室温即可。沈洪武等通过对比染色发现，冷冻保存1年的Schiff液的染色结果与新鲜配制的染色结果一致[5]。0.5％～1％高碘酸（pH值在3.0～5.0之间），环境温度以不高于20℃为宜，室温高时氧化时间适当缩短；如果染色时环境温度较高且高碘酸作用时间长，可使某些物质成分发生非特异反应，使染色结果出现假阳性。因此，室温较高时可适当缩短反应时间。一般厚度不超过3mm，大小不超过5×5m㎡。浙江哪家提供糖原染色试剂盒服务电话

网状纤维的变化，反映了疾病的发生和发展的不同过程，对疾病的诊断有极大意义。网状纤维的多少、粗细紧密、疏松或断裂，都是病理检验的重要指标，尤其是在临床病理诊断中，可根据其存在和分布来鉴别与肉瘤。而在HE染色标本上，网状纤维不易显色。所以网状纤维的组织化学染色，在临床病理诊断上占着相当重要的位置。网状纤维染色：网状纤维是非常细而短的纤维，大量堆积时则形成致密的网状，故有网状纤维之称。疏松组织中网状纤维比较少，它多分布在结缔组织与其它组织交界处，如在上皮组织与结缔组织交界处的基膜内，血管周围以及造血部位，内分泌腺的腺细胞团索和外分泌腺的腺末房周围等处均有丰富的网状纤维。哪家提供糖原染色试剂盒量大从优常需要分别选用相应的显示这些成分的染色方法进行特殊染色。

PAS染色试剂配制及染色方法：1.材料与方1.1实验材料新鲜小白鼠肝脏、肾脏标本各30例，均来自我室实验材料。1.2主要试剂1.2.1AAF固定液又称酒精醋酸福尔马林混合固定液，其配方：无水乙醇80mL，冰醋酸5mL、甲醛10mL。1.2.2Carnoy固定液氯仿300mL，冰醋酸100mL，95％酒精600mL。1.2.3过碘酸溶液0.5g过碘酸（HIO）溶于100mL蒸馏水或者70％酒精溶液中，或者按如下配方配制：过碘酸0.8g，95％乙醇70mL，醋酸钠0.27g，水20mL。待溶解后置于4℃冰箱避光保存。1.2.4无色品红液（Schiff氏液）在三角烧内加入蒸馏水500mL，煮沸后，在保持微沸的情况下，加入碱性品红2.5g，并不断摇动约5min（勿使之沸腾），使碱性品红彻底溶解（溶解液为深红色）。冷却到50℃时，过滤，加入1N盐酸50mL，再待冷却至25℃时加入偏重亚硫酸钠2.5g，塞住瓶口，摇动容器以充分混合（此时颜色明显变淡），然后避光放置或冰箱内24h

糖原D-PAS染色液注意事项：1、切片脱蜡应尽量干冷，否则影响染色效果。需使用一张阳性对照片验证酶的活性。2、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时温度以18～22℃较佳。3、试剂(A)、试剂(B)、试剂(C)、应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前较好提前取出恢复到在室温后，避光暗处使用。4、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。5、在过碘酸溶液和SchiffReagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。6、况冶切片染色时间尽量要短。糖原染色显示在肝或心肌细胞内有大量糖原存在即可确诊。

糖原染色：方法固定液Carnoy固定液：纯酒精60ml冰醋酸10ml氯仿30ml,也可以选用75%酒精配制1)过碘酸酒清夜配法:过碘酸(HIO.2HO)0.4g95%酒精35mlM/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml)5ml蒸馏水10ml保存于冰箱内,用棕色瓶,可用两周.2)Schiff氏液:0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中,时时摇动三角瓶5分钟,使之充分溶解.冷却至50℃后过滤加入10毫升1N盐酸.冷却至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸钠,在室温中至少静置24小时,然后密封冰箱保存.3)Schiff氏酒**配置Schiff氏液11.5ml1NHCI0.5ml纯酒精23ml4)亚硫酸水1%偏重亚硫酸蒸馏水180ml的树胶溶解~糖类从组织化学技术角度来分，可分为多糖、中性粘液物质。江西哪家提供糖原染色试剂盒厂家直销

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