浙江疫苗产品用宿主细胞蛋白（HCP）残留检测常见问题分析

湖州申科生物参照 USP 通则 <1132.1> 的相关内容，凭借公司在生物制品质量控制领域十余年的深耕经验，对 LC-MS 检测 HCPs 的方法开展评价与优化。同时通过为 LC-MS 检测 HCPs 的整体流程构建完整质控体系，建立起一套抗干扰能力强、稳定性佳、准确度高且结果真实可靠的 LC-MS 检测 HCPs 标准方法。该检测技术平台包含样品制备、质谱检测、数据生信分析及质谱结果方法验证四个部分，目前利用该 LC-MS 平台已完成对 293T、不同工艺大肠杆菌（E.coli）、CHO、Vero、MDCK、Sf9 等不同工程细胞 HCPs 抗体覆盖率的检测分析。

全球范围内快速增长的抗体、蛋白类等生物药，均由对应的工程细胞生产制备。在生物制品生产流程中，宿主细胞产生的内源性蛋白（即宿主细胞蛋白，Host Cell Proteins, HCPs），会随不同工艺环节部分残留在终产品中。HCPs 作为外源蛋白，可能在不同程度上诱发机体免疫应答，进而引发过敏反应或其他不良反应；此外，部分残留 HCPs 具备蛋白酶或脂酶活性，可能造成蛋白药物或辅料降解，从而加大药物质量与疗效的不稳定性。基于上述风险，对药物中 HCPs 开展定性与定量检测至关重要。全球主要药典（如美国药典、欧洲药典、中国药典）均针对 HCPs 检测制定了具体要求与标准。

目前利用 Vero 细胞培养的病毒包括狂犬病病毒、脊髓灰质炎病毒等，种类多样，生产工艺也各有不同。湖州申科生物的 Vero 细胞裂解型 HCP 残留检测试剂盒（一步酶联免疫吸附法），针对工艺中 Vero 细胞裂解后产生的大量不同类型 HCPs，可定量检测采用 Vero 细胞系生产且经细胞裂解工艺收获的生物制品中宿主细胞蛋白残留，其抗体和校准品可覆盖近 3000 种蛋白。该试剂盒操作简便，能提升实验人员的时间利用效率。抗体覆盖率分别为 65.1%-85.1%（IMBS-2D）和 76.9%（IMBS-MS，Unique Peptide≥2）。试剂盒严格依据 ISO13485 质量体系生产，且按法规要求完成性能验证，各项性能均满足 Vero 宿主细胞蛋白检测需求。

美国药典（USP）1132 章节中，推荐的 HCP 抗体纯化方式有两种，分别是 Protein A/Protein G 亲和柱层析法与 HCP 抗原亲和柱层析法。这两种方法各有特点与不足，且均满足监管层面的要求。在实际应用场景中，针对不同产品，两种方法可能造成检测结果的差异。两种方法所获抗体的关键差异，在于 HCP 抗体有效含量的占比不同。其中，HCP 抗原亲和柱层析法的有效含量占比明显更高，但该方法存在部分 HCP 抗体流失的情况，这会使得针对特定样本的检测结果低于前者，因此企业在实际建立检测方法时，需开展充分评估。此外，HCP 抗原亲和柱层析法对纯化工艺的要求更为严格，若要确保抗体的批间一致性，需重点考察 HCP 抗原柱的制备工艺、柱子的使用寿命以及再次制备时的一致性等关键问题。

美国药典 USP 通则 <1132.1>《质谱法测定生物药中残留宿主细胞蛋白》（Residual Host Cell Protein Measurement in Biopharmaceuticals by Mass Spectrometry），主要内容是介绍 LC-MS 技术在宿主细胞残留蛋白检测中的应用。该通则围绕样品制备、质谱测试条件建立、数据分析、质谱方法验证等维度，详细说明质谱技术应用于 HCPs 检测的优势及需注意的事项。作为先进的分析技术平台，质谱技术在 HCPs 分析中的应用，无论是单独使用，还是与 ELISA 及其他分析方法联合使用，都能帮助生产企业在产品全生命周期中更清晰地理解并建立 HCPs 检测方法，进而保障产品质量稳定。

在宿主细胞蛋白（HCP）残留检测的分析方法里，ELISA法应用较多，也是QC日常放行检测的主要方式。该方法操作相对简便、检测精度较好，便于设定控制范围与制定技术规范，适用于产品开发及过程控制；不过，ELISA检测依赖抗原与抗体的特异性结合，因此以生物制品中HCP为免疫原制备的抗体质量，对检测结果影响极大。无论是市售ELISA试剂盒，还是实验室自制的多克隆抗体，若抗体的特异性与适用性不足，都可能导致HCP漏检，进而给生物制品质量安全埋下隐患。另外，ELISA检测HCP时采用多克隆抗体，无法针对性反映高风险HCP残留蛋白的实际存在状况。