吉林疫苗产品支原体检测国产替代

针对新型生物制品中 10⁷细胞基质、全血、1mg/mL 高浓度质粒、5% 人白等特殊复杂样品基质，MycoSHENTEK^® 支原体 qPCR 检测试剂盒（2G）进行了方法性能验证，展现出极强的样品适用性。实验数据显示，在 CHO-S&Vero 细胞（10⁷个）、5% 人血白蛋白、全血等基质中，该试剂盒对 10 CFU/mL 或 100 CFU/mL 的支原体均能稳定检出，扩增曲线清晰可靠。其优化的前处理流程与检测体系有效规避了复杂基质的干扰，无需额外传代步骤，彻底解决了传统方法在复杂样品检测中易受抑制、结果不准的问题，覆盖病毒、培养液、成品等多种样品类型。

支原体 NAT 检测的特异性验证面临主要挑战：需设计覆盖多种支原体的 PCR 引物，而覆盖范围越广，越可能因支原体与革兰氏阳性菌的系统进化相关性，出现交叉检测现象，影响结果准确性。因此，特异性验证需重点排查非目标微生物的干扰，确保检测结果的专一性。稳健性验证同样关键，需证实检测方法在人为引入的微小参数变化（如反应温度、试剂浓度波动等）下，仍能保持结果稳定，避免因实验条件差异导致的检测偏差。这两项验证直接决定了 NAT 方法在不同实验室、不同操作场景下的适用性，是其获得法规认可的重要前提。

全球主流药典均认可 NAT 法作为支原体检测的替代方法，但明确要求需经过充分验证并证明与传统方法的可比性。欧洲药典（EP）2.6.7 规定 NAT 法可作为替代方法，需开展供试品抑制性验证；美国药典（USP）63&77 要求替代方法需与培养法、指示细胞培养法均具备可比性，且 USP<77> 专门针对支原体 NAT 法的验证与检测制定了规范；日本药典（JP）G3-14-170 允许经适当验证后的 NAT 法替代传统方法；中国药典 3301 及相关指导原则明确，CAR-T、干细胞等新型产品可采用 NAT 法，但需充分验证其最低检出限不低于药典方法，早期需与药典方法并行使用。此外，各国法规均强调，NAT 法的选择、开发与应用需基于科学依据，充分考虑培养基、生产工艺、潜在污染菌株等因素。

MycoSHENTEK^® 支原体 DNA 检测试剂盒参照 EP 2.6.7 和 JP XVII 支原体检测相关要求完成全面性能验证，是经过三方室间验证、性能完全符合药典标准的支原体检测试剂盒。该试剂盒检测灵敏度高达 10CFU/mL，可同时替代传统培养法与指示细胞培养法，大幅缩短检测周期。经实验验证，其对鸡滑液支原体、猪鼻支原体、莱氏无胆甾支原体等多种常见污染菌株的检出率均达到 100%（24/24），即使对口腔支原体等低浓度菌株，检出率也满足 95% 以上。凭借覆盖范围广、灵敏度高、性能稳定、合规性强的关键优势，该试剂盒为生物制品企业提供了高效、可靠的支原体检测工具，助力企业满足全球监管要求并保障产品质量。

阴性翘尾是支原体 NAT 检测中常见的异常现象，表现为 NCS 或 NTC 出现扩增信号，Ct 值多在 35~40 之间，需科学评估并处理。首先考虑污染因素，可能是阴性对照被阳性样本、试剂或环境气溶胶污染，建议立即复测，复测时使用带滤芯低吸附 TIP 头，严格执行阴阳性分区操作，注重细节防控。其次需排除背景信号等非典型性扩增的干扰，避免误判为污染。若前期验证中频繁出现 NTC 或 NCS 扩增，且已彻底排除污染可能性，可结合已有实验数据重新设置 Cut off 值，确保阈值线能有效区分真实阳性与背景信号，满足实验室检测需求。

MycoSHENTEK^® 支原体 qPCR 检测试剂盒（2G）完全符合 EP 2.6.7 的全部验证要求，其检测灵敏度、特异性、耐用性均按药典标准完成完整性能验证，具备替代培养法和指示细胞培养法的合规资质。该试剂盒针对新型生物制品的检测痛点优化升级，经多种支原体菌株验证，灵敏度稳定达到 10 CFU/mL，满足法规对替代培养法的要求。同时，产品遵循 ISO13485 体系认证和 GMP-like 生产标准，可提供完整的验证报告、质检报告及菌株溯源文件，全程贴合各国药典监管要求，为企业合规检测提供坚实支撑。