河北干细胞产品支原体检测国产替代

菌株质量是支原体检测 NAT 方法验证合规的关键，GC/CFU 比（基因组拷贝数与菌落形成单位比值）是关键控制指标。支原体存在聚集特性，单一 CFU 可能对应多个菌体，且 DNA 复制与细胞分裂不同步，部分菌体无法形成菌落但会释放 DNA，导致 GC/CFU 比波动大（研究报道 0.1 CFU 对应 30-500 个基因组拷贝）。若使用高 GC/CFU 比菌株，会高估检测限、导致方法灵敏度不足，因此法规明确要求菌株 GC/CFU 比＜10。2024 年 EDQM 36.1 草案规定参考品 GC/CFU 比应小于 10，USP 77 征求意见稿要求表征菌株 GC/CFU 比、建立菌株库 CFU 与核酸拷贝数关系，JP G3-14-170 也对菌株质量提出明确要求，凸显合规菌株选择的重要性。

取样量的科学设计直接影响支原体检测的代表性与灵敏度，需结合样品总体积、基质特性综合考量。法规建议：产品总体积大于1000mL的按无菌检查法取样，10-1000mL 取总体积的 1%，1-10mL 取 100μL，小于1mL的需采用替代取样方案。实际检测中，取样体积越大，灵敏度越高，但需平衡洗脱液消耗与重复检测需求。此外，支原体兼具胞内胞外生存特性，只检测上清会导致漏检，需采用细胞裂解等处理方式，确保覆盖全部污染靶点，提升检测结果的真实性。

质控结果是支原体 NAT 检测可靠性的前提，需严格遵循判定标准，且需结合实验室实际条件验证适配的标准阈值。质控样品的判定规则明确：NTC（无模板对照）的 FAM 信号需 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，VIC 信号需 2 复孔 Ct<35 且呈有效 “S” 型扩增；NCS（阴性对照）判定标准与 NTC 一致；PC（阳性质控）的 FAM 信号需 2 复孔 Ct<35 且呈有效 “S” 型扩增，PCS（阳性对照底物）判定标准与 PC 一致。只有质控结果全部满足要求，才能进一步分析样本结果，若质控不达标，需排查设备、试剂、操作等环节的问题并重新检测。

支原体 NAT 检测中常见三类问题，其成因多与样品基质、操作规范或污染防控相关。1、样品基质干扰，高浓度 DMSO、人血白蛋白等冻存保护剂，高浓度细胞、DNA 碎片等复杂成分，会抑制检测反应或干扰信号读取。2、检测曲线异常，表现为非特异性扩增图谱，多因引物设计不当、反应条件优化不足或试剂交叉污染导致。3、阴性污染，具体体现为无模板对照（NTC）、阴性对照（NCS）出现翘尾现象，主要源于实验室分区不合理、操作流程不规范（如阴阳性样本交叉处理）、耗材污染或环境气溶胶污染，这些问题均会影响结果判定的准确性，需针对性解决。

培养基的科学选择与合规使用是支原体培养法检测成功的基础，湖州申科按 USP 标准明确了三类推荐培养基的适用场景。Hayflick Media 用于支原体一般性检测，Frey Media 专门针对滑液囊支原体检测，Friis Media 则适用于非禽类支原体检测。为确保少量支原体（约 100cfu 或 100ccu）不被遗漏，需使用足够数量的固体与液体培养基开展检测；若选用其他替代培养基，必须严格符合 USP 标准要求。此外，每批培养基均需进行针对性的微生物检测（即营养特性测试），通过标准化的质量把控，避免因培养基性能缺陷导致检测失效，为后续检测流程提供稳定可靠的基础条件。

MycoSHENTEK^® 支原体 qPCR 检测试剂盒（2G）完全符合 EP 2.6.7 的全部验证要求，其检测灵敏度、特异性、耐用性均按药典标准完成完整性能验证，具备替代培养法和指示细胞培养法的合规资质。该试剂盒针对新型生物制品的检测痛点优化升级，经多种支原体菌株验证，灵敏度稳定达到 10 CFU/mL，满足法规对替代培养法的要求。同时，产品遵循 ISO13485 体系认证和 GMP-like 生产标准，可提供完整的验证报告、质检报告及菌株溯源文件，全程贴合各国药典监管要求，为企业合规检测提供坚实支撑。