宿主细胞蛋白（HCP）残留检测性能验证

湖州申科生物专注于研发贴合实际生产工艺的商业化宿主细胞蛋白（HCP）残留检测试剂盒，依托不同工艺下 HCP 的差异化分析，针对性推出各细分工艺领域的 HCP 检测试剂盒。实验数据显示：针对 CHO-S 与 CHO-K1 两种宿主细胞，两类细胞共享 2458 种相同 HCP（占比 79.7%），但各自存在 392 种和 236 种特异性 HCP，充分体现工艺差异带来的残留蛋白特异性。进一步对比 B3 表达菌与 K2 克隆菌，尽管二者共享 1489 种相同蛋白（分别占比 88% 和 85%），但仍各自检出 208 种和 258 种独有蛋白，差异率为 12%-15%。这些结果直接证实，不同工艺路线与克隆株选择会影响 HCP 残留谱的构成。据此，湖州申科提出 “工艺定制化检测” 策略：通过准确识别共性与特异性 HCP，针对性研发细分试剂盒产品。

湖州申科生物依托先进的整合技术平台，在 HCP 检测领域构筑优势。公司自主研发出突破性技术，包括基于 IMBS 的抗体覆盖率检测方法与基于核酸文库的低丰度 HCP 富集技术，有效提升 HCP 检测灵敏度与抗体覆盖能力，相关成果已在《中国新药杂志》《药物分析杂志》等期刊发表，且被纳入国家科技重大专项。同时，借助前沿的精密分析平台，湖州申科打造了覆盖完整 HCP 分析链条的 LC-MS 解决方案，涵盖抗原一致性评价、IMBS 前处理、低丰度蛋白富集、生信分析及专属数据库构建等关键环节，构建起从样品管理到风险分析的闭环体系。该平台严格遵循法规要求，所有检测技术均通过符合 ICH 及药典标准的方法学验证，确保检测数据可靠，且满足生物制品申报（如 IND/BLA）的法规要求。凭借这一技术整合能力，公司已为国内外上百家生物医药企业提供从工艺开发到质控放行的一站式 HCP 检测服务，助力单抗、疫苗等产品提升安全性与合规性。

在关键物料开发基础上，湖州申科生物 HCP ELISA 检测试剂盒的开发流程还包含第三大关键阶段 —— 检测体系开发及验证，这一环节直接关系检测方法的可靠性。公司会开展严格的检测体系开发与验证工作，验证方案完全契合 ICH 指导原则及药典中关于分析方法验证的标准要求，确保检测体系的科学性与合规性。同时，为进一步保障产品品质，公司在生产全流程中严格落实物料质量控制，并全程在洁净车间环境中完成生产，从过程管控层面确保试剂盒方法的稳健性、重现性与法规符合性。这套从抗原源头把控，到关键抗体制备，再到检测体系验证与洁净生产的标准化、合规化全流程开发模式，并非单一环节的质量管控，而是形成了完整的品质保障链条，成为湖州申科 宿主细胞蛋白（HCP）残留检测产品品质与可靠性的重点支撑。

定制化试剂盒之所以成为宿主细胞蛋白（HCP）残留检测的优先选择，原因之一在于其构建的定制化检测体系，更契合商业化生产中HCP工艺杂质的控制需求。在HCP校准品与HCP抗体这两大关键试剂组分符合要求的基础上，定制化方法的建立与优化依托真实的纯化中间品及原液样品开展，通过优化检测条件提升对低浓度HCPs的检测灵敏度，从而满足工艺验证与过程控制的需求。进入临床三期阶段，生产工艺需开展系统验证，以保障工艺的稳定性与可重复性。此时，定制化HCPELISA检测方法可更准确地监测生产工艺中HCP的去除成效，为工艺验证提供坚实支撑。在过程控制环节，借助工艺特异型HCPELISA检测方法，可实时监测生产过程中的HCP水平，拥有更强的生产异常预警能力，能及时排查生产风险，保障产品质量稳定。编辑分享将定制化试剂盒用于HCP残留检测的优势分点列出推荐一些关于定制化试剂盒在HCP残留检测中应用的研究报告除了文中提到的方法，还有哪些可以提高HCP检测灵敏度的技术？

宿主细胞蛋白（HCP）残留监测是生物药物生产中的关键质量属性（Critical Quality Attribute, CQA），需在药物开发与生产阶段对 HCP 的存在实施严格监控、管理及记录。随着生产流程推进，生物制品目标蛋白纯度逐步提升，HCP 含量则相应持续下降，这导致对单抗、融合蛋白等富含目标蛋白的下游工艺样品进行 HCP 分析监测时，难度明显增加。在此背景下，高效的 HCP 富集材料与技术显得尤为重要。SHENTEK^®AbunProteoX 是基于磁珠构建的亲和配体，能高效识别并结合目标蛋白；借助磁性纳米颗粒的独特特性，它可快速高效捕获 HCP，大幅提升检测灵敏度。此外，该亲和配体的普遍适用性，让 AbunProteoX 处理多种生物样本时表现优异，可确保样品中存在高浓度目标蛋白时，对低浓度 HCP 的质谱、电泳等检测分析具备准确性与可靠性。

宿主细胞蛋白残留检测中，抗体覆盖率评估实验的操作难度较高，需在实验方法建立阶段对关键步骤开展充分验证，以确保实验方法具备稳健性。湖州申科研发的磁珠捕获式 IMBS 技术（immunomagnetic beads separation，免疫磁珠分离），在开发过程中已对关键步骤进行充分验证，相关验证结果已通过专业评审，具体验证内容（部分）如下：① 方法优化：围绕磁珠与抗体的偶联比例、洗涤液体积、洗涤次数、洗脱次数等关键参数开展优化验证，确保方法稳健性；② 过程质控：二维电泳存在实验步骤繁琐、时间跨度大、中间环节难把控等问题，因此在等电聚焦实验环节引入荧光标记多肽，可快速判定等电聚焦效果；同时在 SDS-PAGE 电泳两侧增设 40 ng 银染质控样品，用于控制银染显色过程；③ 方法重复性：针对 2D 分析与 LC-MS 分析开展重复性验证，其中 2D 分析方法的重复性可达 80% 以上，LC-MS 分析方法的重复性可达 90% 以上；④ 上样量优化：针对 2D 分析与 LC-MS 分析实施上样量验证，规避上样量差异对检测结果的影响；⑤ 假阳性排查：排查样品与阴性抗体间是否存在非特异性结合，确认 IMBS 实验设定的步骤与参数是否会导致假阳性结果。