辽宁生物制品支原体检测指示细胞培养法

菌株质量是支原体检测 NAT 方法验证合规的关键，GC/CFU 比（基因组拷贝数与菌落形成单位比值）是关键控制指标。支原体存在聚集特性，单一 CFU 可能对应多个菌体，且 DNA 复制与细胞分裂不同步，部分菌体无法形成菌落但会释放 DNA，导致 GC/CFU 比波动大（研究报道 0.1 CFU 对应 30-500 个基因组拷贝）。若使用高 GC/CFU 比菌株，会高估检测限、导致方法灵敏度不足，因此法规明确要求菌株 GC/CFU 比＜10。2024 年 EDQM 36.1 草案规定参考品 GC/CFU 比应小于 10，USP 77 征求意见稿要求表征菌株 GC/CFU 比、建立菌株库 CFU 与核酸拷贝数关系，JP G3-14-170 也对菌株质量提出明确要求，凸显合规菌株选择的重要性。

选择合适的商业化支原体试剂盒需综合五大主要维度，确保检测合规、稳定与高效。一是监管认可度，需关注试剂盒验证的全面性与室间验证情况，菌株选择是否合规，以及厂家是否有丰富的客户申报案例；二是厂家资质，确认厂家是否接受供应商审计，能否提供 “产品 + 服务” 的全流程解决方案；三是产品设计，重点考察试剂盒方法学验证的严谨性、对复杂样品基质的耐用性与抗干扰能力，以及是否具备避免假阴 / 假阳性的质控设计，是否符合药典要求；四是技术支持，评估厂家的技术响应速度、问题解决能力，能否提供专业的验证指导；五是质量保障，关注试剂盒供应的稳定性与质量均一性，避免因产品批次差异影响检测结果，确保长期质控需求的稳定满足。

污染防控是支原体 NAT 检测的重要环节，需建立全流程规范，从实验室布局、准备工作、实验操作到废弃物处理层层把关。实验室需严格分区并做好明显标识，包括试剂准备区（阴性试剂配制）、标曲配制区（超净台内操作）、样本制备区（样本分装与提取）、模板加样区（纯化产物加样）、PCR 扩增区（扩增产物尽量不开盖），各区域配备单独的移液器、Tip 头、实验服等耗材。实验前需穿戴整齐手套与实验服，用 75% 酒精棉擦拭消毒工作台及设备，准备好含消毒液的废液缸。操作过程遵循 “先阴后阳” 原则，建议使用自动化设备提取，提取后尽快转移纯化液。废弃物需规范处理，倒入医疗垃圾袋统一处置，废液缸经消毒液处理后用清水冲洗干净。

目前支原体检测主要有培养法、指示细胞培养法和核酸扩增技术（NAT）法三类，三者在性能与适用场景上差异明显。培养法作为检测金标准，灵敏度极高，但检测周期长达 28 天，手动操作需数天，依赖较高水平的操作技能，且因使用活菌株作为阳性质控，污染风险高，需在特殊实验室开展，检测前还需进行培养基灵敏度验证。指示细胞培养法为药典认可的传统方法，成本较低，但检测周期仍需 14-20 天，灵敏度偏低，同样存在活菌株污染风险，无法满足快速放行需求。NAT 法（核酸扩增法）检测周期只需 3-7 小时，手动操作时间为数小时，采用灭活菌株降低污染风险，样本需求量少、灵敏度高，但无法区分死菌与活菌，且需要开展充分验证，对操作人员的专业技能有一定要求，已逐步成为生物制药企业产品放行检测的youxia方案。

支原体 NAT 检测的特异性验证面临主要挑战：需设计覆盖多种支原体的 PCR 引物，而覆盖范围越广，越可能因支原体与革兰氏阳性菌的系统进化相关性，出现交叉检测现象，影响结果准确性。因此，特异性验证需重点排查非目标微生物的干扰，确保检测结果的专一性。稳健性验证同样关键，需证实检测方法在人为引入的微小参数变化（如反应温度、试剂浓度波动等）下，仍能保持结果稳定，避免因实验条件差异导致的检测偏差。这两项验证直接决定了 NAT 方法在不同实验室、不同操作场景下的适用性，是其获得法规认可的重要前提。

2023 年美国国立卫生研究院（NIH）的对比研究得出一个结论是并非所有商业化支原体检测试剂盒都能满足替代传统方法的要求，研究对市面上 5 款主流试剂盒（ATCC、梅里埃、赛默飞、罗氏、MB）进行测试，发现不同试剂盒对不同支原体菌株的检测灵敏度差异明显，部分产品无法达到宣称的≤10 CFU/mL 检测限（符合欧、日药典替代培养法的要求）。例如，ATCC 试剂盒对莱氏无胆甾原体、精氨酸支原体的检测限只为 100 CFU/mL，MB 试剂盒对硬蜱螺原体无法检出（>1000 CFU/mL）。这一现象表明，试剂盒的检测性能与支原体菌株特性密切相关，因此企业需根据待测样品的原辅料来源和检测目的，对试剂盒进行严格的性能验证，避免因检测限不达标导致质量风险。