上海疫苗产品支原体检测培养法

质控结果是支原体 NAT 检测可靠性的前提，需严格遵循判定标准，且需结合实验室实际条件验证适配的标准阈值。质控样品的判定规则明确：NTC（无模板对照）的 FAM 信号需 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，VIC 信号需 2 复孔 Ct<35 且呈有效 “S” 型扩增；NCS（阴性对照）判定标准与 NTC 一致；PC（阳性质控）的 FAM 信号需 2 复孔 Ct<35 且呈有效 “S” 型扩增，PCS（阳性对照底物）判定标准与 PC 一致。只有质控结果全部满足要求，才能进一步分析样本结果，若质控不达标，需排查设备、试剂、操作等环节的问题并重新检测。

支原体 NAT 检测中常见三类问题，其成因多与样品基质、操作规范或污染防控相关。1、样品基质干扰，高浓度 DMSO、人血白蛋白等冻存保护剂，高浓度细胞、DNA 碎片等复杂成分，会抑制检测反应或干扰信号读取。2、检测曲线异常，表现为非特异性扩增图谱，多因引物设计不当、反应条件优化不足或试剂交叉污染导致。3、阴性污染，具体体现为无模板对照（NTC）、阴性对照（NCS）出现翘尾现象，主要源于实验室分区不合理、操作流程不规范（如阴阳性样本交叉处理）、耗材污染或环境气溶胶污染，这些问题均会影响结果判定的准确性，需针对性解决。

支原体 NAT 检测的特异性验证面临主要挑战：需设计覆盖多种支原体的 PCR 引物，而覆盖范围越广，越可能因支原体与革兰氏阳性菌的系统进化相关性，出现交叉检测现象，影响结果准确性。因此，特异性验证需重点排查非目标微生物的干扰，确保检测结果的专一性。稳健性验证同样关键，需证实检测方法在人为引入的微小参数变化（如反应温度、试剂浓度波动等）下，仍能保持结果稳定，避免因实验条件差异导致的检测偏差。这两项验证直接决定了 NAT 方法在不同实验室、不同操作场景下的适用性，是其获得法规认可的重要前提。

MycoSHENTEK^® 支原体 qPCR 检测试剂盒（2G）完全符合 EP 2.6.7 的全部验证要求，其检测灵敏度、特异性、耐用性均按药典标准完成完整性能验证，具备替代培养法和指示细胞培养法的合规资质。该试剂盒针对新型生物制品的检测痛点优化升级，经多种支原体菌株验证，灵敏度稳定达到 10 CFU/mL，满足法规对替代培养法的要求。同时，产品遵循 ISO13485 体系认证和 GMP-like 生产标准，可提供完整的验证报告、质检报告及菌株溯源文件，全程贴合各国药典监管要求，为企业合规检测提供坚实支撑。

菌株质量是支原体检测 NAT 方法验证合规的关键，GC/CFU 比（基因组拷贝数与菌落形成单位比值）是关键控制指标。支原体存在聚集特性，单一 CFU 可能对应多个菌体，且 DNA 复制与细胞分裂不同步，部分菌体无法形成菌落但会释放 DNA，导致 GC/CFU 比波动大（研究报道 0.1 CFU 对应 30-500 个基因组拷贝）。若使用高 GC/CFU 比菌株，会高估检测限、导致方法灵敏度不足，因此法规明确要求菌株 GC/CFU 比＜10。2024 年 EDQM 36.1 草案规定参考品 GC/CFU 比应小于 10，USP 77 征求意见稿要求表征菌株 GC/CFU 比、建立菌株库 CFU 与核酸拷贝数关系，JP G3-14-170 也对菌株质量提出明确要求，凸显合规菌株选择的重要性。

支原体 NAT 检测中异常曲线的出现多与操作设置、耗材使用或实验环境相关，需针对性排查解决。首先需确认软件设置正确性，对照试剂盒说明书检查时间、温度、循环数、荧光采集等参数，尤其需注意关闭不含 ROX 试剂的参比荧光功能。其次若扩增曲线无抬升却出现 CT 值，需调整基线范围，将起点设为荧光信号稳定的循环数，终点设为扩增曲线起峰前一个循环数。再者需确保耗材与仪器匹配，避免使用普通 PCR 耗材或与加热模块规格不符的反应管，防止荧光传导不佳或热传导不充分。此外，曲线先上升后下降可能是反应液蒸发导致，上机前需检查八连管管盖无缝隙，避免液面下降干扰结果。