江苏生物制品支原体检测可比性验证

支原体 NAT 检测的准确性与可靠性受多重因素综合影响，需从人员、方法、设备、试剂耗材、实验室环境五方面严格把控。人员需接受专业培训，熟练掌握 PCR 技术理论与实操流程，积累足够经验并具备责任心，确保操作规范性。方法建立需遵循合理流程并完成充分验证，避免因方法缺陷导致结果偏差。设备方面，PCR 仪与前处理设备的性能、精度、稳定性及定期校准至关重要，直接影响检测数据的重复性。试剂耗材需满足要求：前处理试剂能应对复杂样本基质、耐受常见干扰，检测试剂经性能验证且批间稳定性良好，同时需选用质量合格的耗材。实验室需合理布局，建立完善的管理规范与污染防控措施，为检测提供洁净、可控的环境，避免外部因素干扰。

湖州申科构建了具有完备资质的支原体技术服务平台，为企业提供多元化支持。平台拥有 BSL-2/P2 微生物实验室备案资质，遵循 GMP-like 质量体系，具备支原体培养法、指示细胞法与 qPCR 法的检测及验证能力，配备符合药典要求的支原体标准菌株库与高灵敏度培养基（含液体、固体、半流体）。企业已通过 ISO13485:2016 质量管理体系认证（证书号 MD 709873），检测中心获得 CNAS 认证（注册号 CNAS L21942），符合 ISO/IEC 17025:2017 标准，具备国际互认资质。平台可提供多元化技术服务，包括支原体 qPCR 法检测能力建立、实验员能力考核、质量体系与流程搭建、实验室设计方案优化，以及样品检测（三种方法）、样品适用性验证、方法学验证、传统法与 qPCR 法比对、特殊菌株定制生产等，申报阶段可配合客户与监管机构完成现场审计。

支原体 NAT 检测的样本结果需结合 FAM 信号与 VIC 信号的表现综合判定，同时警惕抑制现象对结果的影响。若 FAM 信号 2 复孔有 1 孔以上 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，VIC 信号 2 复孔 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，判定为阳性；若 VIC 信号 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，则为阳性但存在抑制。若 FAM 信号 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，VIC 信号 2 复孔 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，判定为阴性；若 VIC 信号同样 Ct≥40 或无明显扩增曲线，则阴阳性无法判断且存在抑制。出现抑制现象需重测，重测仍有抑制时，阳性倾向样本可适当稀释，阴性倾向样本需优化提取条件。

培养基的科学选择与合规使用是支原体培养法检测成功的基础，湖州申科按 USP 标准明确了三类推荐培养基的适用场景。Hayflick Media 用于支原体一般性检测，Frey Media 专门针对滑液囊支原体检测，Friis Media 则适用于非禽类支原体检测。为确保少量支原体（约 100cfu 或 100ccu）不被遗漏，需使用足够数量的固体与液体培养基开展检测；若选用其他替代培养基，必须严格符合 USP 标准要求。此外，每批培养基均需进行针对性的微生物检测（即营养特性测试），通过标准化的质量把控，避免因培养基性能缺陷导致检测失效，为后续检测流程提供稳定可靠的基础条件。

长期以来，支原体检测主要依赖培养法和指示细胞法，且法规通常要求两种方法同时使用，但这两类方法存在明显短板——培养法检测周期长达 28 天，指示细胞法也需较长时间等待结果。随着细胞疗法药物快速发展，其上市周期短、货架期有限的特点，使得传统方法难以满足药物放行的时效要求。核酸扩增技术（NAT）尤其是荧光探针 qPCR 检测方法的出现，凭借检测速度快、特异性强的优势，成为支原体检测的理想替代方案。作为替代方法，NAT 检测需通过严格验证以达到法规要求的灵敏度：检测限达到 10CFU/mL 可替代培养法，达到 100CFU/mL 可替代指示细胞培养法，从而实现快速且可靠的支原体筛查。

2023 年美国国立卫生研究院（NIH）的对比研究得出一个结论是并非所有商业化支原体检测试剂盒都能满足替代传统方法的要求，研究对市面上 5 款主流试剂盒（ATCC、梅里埃、赛默飞、罗氏、MB）进行测试，发现不同试剂盒对不同支原体菌株的检测灵敏度差异明显，部分产品无法达到宣称的≤10 CFU/mL 检测限（符合欧、日药典替代培养法的要求）。例如，ATCC 试剂盒对莱氏无胆甾原体、精氨酸支原体的检测限只为 100 CFU/mL，MB 试剂盒对硬蜱螺原体无法检出（>1000 CFU/mL）。这一现象表明，试剂盒的检测性能与支原体菌株特性密切相关，因此企业需根据待测样品的原辅料来源和检测目的，对试剂盒进行严格的性能验证，避免因检测限不达标导致质量风险。